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蛋白質(zhì)印跡故障排除

更新時間:2023-08-11      點擊次數(shù):1384

故障排除

以下故障排除指南旨在解釋蛋白質(zhì)印跡中觀察到的常見問題的原因和可能的解決方案。

Simple Western™ 可以克服傳統(tǒng)蛋白質(zhì)印跡法中需要排除故障的許多挑戰(zhàn),它可以在臺式儀器內(nèi)自動執(zhí)行蛋白質(zhì)印跡法的傳統(tǒng)步驟。 Simple Western 使用毛細管電泳,消除了傳統(tǒng)蛋白質(zhì)印跡的凝膠到印跡轉移,提供定量和可重復的結果。了解有關Bio-Techne 品牌 ProteinSimple 的Simple Western 儀器的更多信息。

無信號或信號弱

一抗?jié)舛忍?/strong>

  • 增加一抗的濃度(滴定可能有幫助)。Novus 抗體濃度試劑盒可用于增加一抗?jié)舛取?/span>

  • 將孵育時間延長至 4°C 過夜

  • 如果一抗重復使用次數(shù)過多,則有效抗體濃度可能太低;使用新鮮抗體來改善信號

目標蛋白濃度太低

  • 每孔加載更多蛋白質(zhì)(滴定可能有幫助)

  • 使用已知表達目標蛋白的陽性對照裂解物、過表達裂解物或重組蛋白

  • 確保裂解緩沖液是目標蛋白的最佳緩沖液;裂解緩沖液根據(jù)靶蛋白定位而有所不同。

  • 如果需要增加非豐度蛋白質(zhì)的濃度,請使用免疫沉淀或分級分離(即核分級分離)

  • 在裂解緩沖液中加入蛋白酶抑制劑

  • 確保樣品未降解

蛋白質(zhì)從凝膠到膜的轉移不成功

  • 通過膜的麗春紅染色或凝膠的考馬斯染色確認蛋白質(zhì)已成功轉移到膜上。

  • 通過分析加載控制表達式確認等量轉移

一抗和二抗不兼容

  • 確保二抗是針對產(chǎn)生一抗的物種而產(chǎn)生的

  • (例如,如果一抗是在小鼠中產(chǎn)生的,則使用抗小鼠二抗)

膜選擇不理想

  • 檢查抗原序列的疏水性/親水性。 PVDF 膜可能更適合親水性/極性/帶電抗原,而硝酸纖維素膜可能更適合疏水性/非極性抗原

存在阻塞問題

  • 封閉時間過長會掩蓋某些表位并抑制抗體結合;減少封閉孵育時間或封閉液濃度

  • 切換到不同的阻塞解決方案

膜沖洗過度

  • 隨著時間的推移,檢測試劑可能會變得不活躍。確保試劑新鮮。二抗可以通過將其點在膜上并與檢測試劑一起孵育印跡來進行測試。

  • 處理低豐度蛋白質(zhì)時,使用更靈敏的試劑(滴定可能有幫助;如果稀釋,請使用高純水)

圖像曝光時間太短

  • 增加曝光時間(多次檢查以達到最佳曝光時間)

抗體僅識別天然蛋白質(zhì)

  • 如果使用僅識別天然蛋白質(zhì)的抗體,請勿使用還原的變性蛋白質(zhì)

目標是低分子量

  • 減少傳輸時間以防止過度傳輸。對于小蛋白質(zhì)以及孔徑較小的膜(0.2 μm 與 0.45 μm),建議使用濕轉法

發(fā)生疊氮hua鈉污染

  • 疊氮hua鈉(通常用于儲存一抗)會抑制 HRP 活性。確保充分洗滌以去除疊氮hua鈉的存在或使用不含疊氮hua鈉的緩沖液。


高均勻背景

阻擋不足

  • 增加封閉時間和/或溫度

  • 增加封閉劑的濃度(嘗試達到10%)

  • 考慮更換封閉劑(牛奶與 BSA)

  • 在抗體緩沖液中加入可選的封閉劑(也可以增加百分比)

阻止不兼容

  • 對于磷酸化蛋白質(zhì)的檢測,不建議使用牛奶(牛奶和酪蛋白富含磷酸化蛋白質(zhì))

由于高抗體濃度導致非特異性結合

  • 降低初級或次級的濃度(滴定可能有幫助)

  • 在抗體緩沖液中加入封閉劑

  • 通過執(zhí)行二抗對照來確認二抗的特異性:省略一抗,僅將印跡與二抗一起孵育。

未結合的抗體洗滌不充分

  • 增加洗滌次數(shù)和/或時間

干膜

  • 確保在蛋白質(zhì)印跡實驗過程中膜永遠不會變干

膠片曝光時間太長

  • 降低曝光時間(可能需要測試一系列曝光時間)

檢測試劑過于敏感

  • 用純水稀釋檢測試劑或使用靈敏度較低的檢測試劑


非特定條帶/尺寸錯誤或多條帶

目標蛋白豐度低于非特異性結合閾值

  • 在 SDS-PAGE 凝膠中加載更多蛋白質(zhì)

  • 通過免疫沉淀或分級分離富集低豐度蛋白質(zhì)

樣品降解

  • 使用新鮮裂解物

  • 將樣品放在冰上,直到樣品緩沖液添加和沸騰之前

  • 如果檢測磷酸化靶標,則始終包含蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑

可能存在其他蛋白質(zhì)亞型

  • 可能存在選擇性剪接或多聚體形成。在這種情況下,可能需要異構體特異性抗體。

可能存在翻譯后修飾

  • 預測的分子量可能受到許多因素的影響,例如糖基化、磷酸化和蛋白質(zhì)加工(從前體形式裂解為成熟形式)。為了確認特異性,進行陽性和陰性對照,例如重組蛋白或過表達裂解物、下調(diào)的敲低/敲除裂解物


有斑點或漩渦的背景

膜處理不當

  • 盡量減少與膜的接觸。使用干凈的工具處理膜

緩沖液污染

  • 制作新鮮的緩沖液

氣泡

  • 轉移前滾平凝膠和膜之間的所有氣泡

HRP聚合

  • 使用 0.2 μm 過濾器過濾二抗以去除聚集物

洗滌不足

  • 增加洗滌緩沖液的體積

  • 增加洗滌次數(shù)和/或持續(xù)時間


其他事宜

白色/空心帶

  • ECL 底物消耗太快。降低一抗/二抗?jié)舛然驕p少蛋白質(zhì)用量

條帶/泳道涂污(樣品超載)

  • 每個泳道中加載較少的蛋白質(zhì)

分子量標記泳道為黑色

  • 抗體可能與分子量標記發(fā)生反應

  • 在分子量標記和第一個樣品泳道之間添加空白泳道



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